静脉血液采集作业指导书

篇2：血液标本采集

血液标本采集

一、不同采血管的采集顺序

　　血培养瓶;

　　柠檬酸钠抗凝采血管;

　　血清采血管，包括含有促凝剂和/或分离胶;

　　含有或不含分离胶的肝素抗凝采血管;

　　含有或不含分离胶的 EDTA 抗凝采血管;

　　葡萄糖酵解抑制采血管。

　　注1：用于分子检测的采血管宜置于肝素抗凝采血管前采集，避免可能的肝素污染引起PCR反应受抑。

　　注2：用于微量元素检测的采血管宜充分考虑前置采血管中添加剂是否含有所检测的微量元素，必要时单独采集;不宜使用注射器采集。

二、真空负压采血管类型及适用检测范围

三、特殊注意事项

　　使用蝶翼针且仅采集柠檬酸钠抗凝标本时，宜弃去第一支采血管。被弃去的采血管用于预充采血组件的管路，无需完全充满。

　　如使用注射器采血，血液从注射器转注至真空采血管中的顺序与真空采血系统的采集顺序相同。不宜拔除真空采血管的胶塞，不宜对注射器针栓施加压力，由血液自行流入采血管，直到血流停止，以确保正确的血液与添加剂比例，并减少溶血的发生。

　　特殊情况只能从静脉留置管中采血时，对于凝血功能检测宜弃去最初的5ml或6倍管腔体积的血液，对于其他检测宜弃去最初的2倍管腔体积的血液。

　　含有添加剂的采血管在血液采集后宜立即轻柔颠倒混匀，混匀次数宜按照产品说明书的要求。不可剧烈震荡混匀，以避免溶血。

四、血液标本无法正常采集时的处理

　　轻微调整进针位置。如采血针刺入静脉过深，可略微抽出。如穿刺不够，可将采血针向静脉中略推入。不宜在不明静脉走向时盲目探查。

　　如穿刺已成功，采集中途血流突然停止，可能是血管壁贴附了针孔，可将采血针旋转半周。如怀疑真空采血管真空度不足，应及时更换采血管。

五、疑似动脉、神经损伤时的处理

　　在采血过程中，如穿刺部位快速形成血肿或采血管快速充盈，怀疑穿刺到动脉，立即终止采血并拔出采血针，按压采血部位5min～10 min，直至出血停止。如需要，可在其他部位进行静脉穿刺。

　　在采血过程中，如患者感到在穿刺部位近端或远端有放射性的电击样疼痛、麻刺感或麻木感，怀疑穿刺到神经，立即终止采血并拔出采血针止血。如需要，可在其他部位进行静脉穿刺。必要时可请临床医生对患者神经损伤程度进行评估及处理。

六、患者晕厥的应急处理

　　如患者在采血过程中出现晕厥，宜立即停止采血，拔出采血针止血;将患者置于平卧位，松开衣领;如疑似患者为空腹采血低血糖可予以口服糖水;观察患者意识恢复情况及脉搏、呼吸、血压等生命体征，如生命体征不稳定宜立即呼叫急救人员。有条件的单位可在采血点配置自动体外除颤仪，并培训工作人员使用。

七、预防标本溶血

　　预防标本溶血注意事项如下：

　　消毒后穿刺部位自然干燥;

　　不可穿过血肿部位采血;

　　如使用注射器采血，宜确保针头牢固地安装在注射器上以防出现泡沫;

　　使用注射器时避免过度用力抽拉针栓;

　　轻柔颠倒混匀含有添加剂的标本。

八、拔针与穿刺点止血

　　先松开止血带，从采血针/持针器上拔出最后一支采血管，从静脉拔出采血针。拔出采血针后，在穿刺部位覆盖无菌棉签、棉球或纱布等，按压穿刺点5min(止血功能异常的患者宜适当延长时间)，直至出血停止。不宜曲肘按压，会增加额外的压力，导致出血、淤血、疼痛等情况发生风险的增加。如在正确按压止血的前提下出现血肿或出血持续时间超过5min，可请临床医生对患者凝血功能进行评估及处理。

　　对于已形成的血肿或淤青，24h内可给予冷敷止血，避免该侧肢体提拎重物，24h后可热敷以促进淤血吸收。

篇3：尿液标本采集作业指导书

尿液标本采集作业指导书

　　1.目的

　　采集尿液标本以做尿液常规、生化检验。

　　2.适用范围

　　适用于本科做尿液常规、生化项目所需尿液标本的采集。

　　3. 物品准备：专用一次性尿杯、编号笔。

　　4. 检验申请单填写要求：

　　4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。

　　4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、化验单编号、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集标本年月日时、申请医生及采样者签名。

　　5. 操作步骤：

　　5.1 查对检验申请单、姓名，向受检者解释操作目的，以取得合作。

　　5.2 发一次性尿杯一个给受检者，嘱受检者留取新鲜尿立即送检，以清晨第一次中间段尿为宜。

　　5.3 受检者按要求自己用一次性尿杯留取半杯尿标本交检验科编号待检。

　　6.注意事项

　　6.1 根据采集时间，可分为晨尿、随机尿、空腹尿、餐后尿、计时尿(2h、3h、12h、24h)等。一般定性分析测定，可在任意时间留取标本。常规定性分析，多采用晨尿。计时尿多用于肾功能和有形成分排出率的估计。许多定量分析需收集 24 小时尿液。微生物检验的标本应取尿道排出的中段尿并立即送检。一般尿液检查应留取新鲜尿液置清净、干燥容器中立即送检。(静脉滴注大剂量青霉素、VitC 时可影响尿蛋白、尿糖及尿隐血结果，应尽量避免)。

　　6.2 特殊检验如尿妊娠试验、尿糖定性试验一般应取空腹晨尿送检。

　　6.3 标本应避免污染。一般定性分析标本，应在留取后马上检测。若需保存、或收集 24 小时尿液，原则上应首选 0～4℃冷藏，必要时可添加化学防腐剂。常用的化学防腐剂有：

　　a. 甲苯(或二甲苯)：较常用，如 24h 尿糖定量、尿蛋白定量测定。100mL 尿液中加 1mL。不能制止尿液中已有细菌的繁殖。

　　b. 氯仿：防腐效果较甲苯好。可能干扰尿沉渣镜检。

　　c. 盐酸：分析测定甾体激素及其衍生物或儿茶酚胺以及含氮物质时常选用。100mL 尿液中加 1mL，或 24 小时尿液中 10~15mL。

　　d. 甲醛：100mL 尿液中加 0.5mL。用于 24h 尿无机离子定量及艾迪氏计数测定可干扰尿糖测定和干化学法的白细胞测定。

　　7. 其它：如分析失败，将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。

　　8.相关文件

　　8.1采样管理程序

　　8.2标本管理程序

　　9.相关记录

篇4：静脉采血的11个常见问题

　　静脉采血的11个常见问题

01多管采血时顺序怎么安排？

　　1、血培养瓶;

　　2、枸橼酸钠抗凝采血管;

　　3、血清采血管，包括含有促凝剂和/或分离胶;

　　4、含有或不含分离胶的肝素抗凝采血管;

　　5、含有或不含分离胶的 EDTA 抗凝采血管;

　　6、葡萄糖酵解抑制采血管。

　　口诀：“一个男(蓝)人很黑(黑)，过红(红)绿(绿)灯要听指(紫)挥(灰)”，简记“蓝黑红绿紫灰”。

02静脉采血，首选哪条静脉?

　　1、首选手臂肘前区静脉，优先顺序依次为正中静脉、头静脉及贵要静脉。

　　2、当无法在肘前区的静脉进行采血时，也可选择手背的浅表静脉。

　　3、全身严重水肿、大面积烧伤等特殊患者无法在肢体找到合适的穿刺静脉时，可选择颈部浅表静脉、股静脉采血。

03哪些部位的静脉不宜选?

　　1、不宜选用手腕内侧的静脉，穿刺疼痛感明显且容易损伤神经和肌腱。

　　2、不宜选用足踝处的静脉，可能会导致静脉炎、局部坏死等并发症。

　　3、其他不宜选择的静脉包括：

　　乳腺癌根治术后同侧上肢的静脉(3个月后，无特殊并发症可恢复采血)。

　　化疗药物注射后的静脉。

　　穿刺部位有皮损、炎症、结痂、疤痕的血管。

04皮肤消毒，选酒精or碘伏?

　　可使用的消毒剂包括(不限于)：碘酊与异丙醇复合制剂，葡萄糖酸洗必泰，聚维酮碘与乙醇复合制剂，碘、醋酸氯己定与乙醇复合制剂，75%医用酒精等。

　　至于选酒精还是选碘伏，WHO《静脉采血的最佳操作》中有提到：

　　除非用于血液培养、或者为采集血液(用于输注)准备，其它所有情况下，穿刺前用75% 酒精擦拭30秒，并等待其完全干燥(30秒)。

　　其理由是：酒精优于碘伏，因为碘伏污染会使血样中钾、磷、或尿酸的化验结果偏高。

05消毒范围，是2cm还是5cm?

　　标准要求：消毒皮肤时，以穿刺点为圆心，以圆形方式自内向外进行消毒，消毒范围直径5cm，消毒2次。

　　对于皮肤消毒，还要注意以下几点：

　　1、消毒皮肤时应当有力但不要过分用力。

　　2、消毒区域要自然晾干。因为消毒剂和皮肤没有足够的接触时间会增加污染的风险。

　　3、不要触摸已清洁的区域，尤其不要把手指放在静脉上面去引导针头。如果碰到了该区域，请重新消毒。

06扎止血带时间有要求吗?

　　行标规定：宜在开始采集第一管血时松开止血带，使用时间不宜超过1min。如某些情况止血带需要在一个部位使用超过1min，宜松开止血带，等待2min 后再重新绑扎。

　　备注：止血带使用时间过长会干扰血流速度和流向，破坏体液和血细胞间的平衡，造成局部血液浓缩或激活凝血系统，导致溶血。

07采血时可以反复攥拳吗?

　　在穿刺时可让患者攥拳，使静脉更加充盈，以利于成功穿刺。

　　但穿刺成功后宜让患者放松拳头，尽量避免反复进行攥拳的动作。

08采血时血流不畅怎么办?

　　首先要确保穿刺成功，如穿刺成功，在采集中途血流突然停止，可能有以下几种情况：

　　1、血管壁贴附了针头斜面：可将采血针旋转半周，看血流是否通畅。

　　2、真空采血管真空度不足：应及时更换采血管。如换管后仍不能正常取血(同时排除其它原因)，多见于大出血和低血压的病人。

09采血后为什么会出现瘀青、血肿?

　　1、按压时间过短：采血后按压时间过短，针眼处血液仍未凝固，松开手指，血液自然流出，导致瘀青、血肿。

　　正确方法：坚持按压3～5分钟，年龄偏大或凝血功能异常患者适当延长按压时间。

　　2、按压面积过小：静脉采血时采血针不仅刺破皮肤表面，还要穿刺静脉血管，所以皮肤表面的针眼并不一定与血管壁上的针眼在同一点上，按压时仅仅用一根手指压住皮肤表面的出血点，不能有效按压住血管上的出血点，导致瘀青、血肿。

　　正确方法：用三根手指压住采血处，增加按压面积，将皮肤表面和血管壁上的出血点整体压住，就可以避免血管继续出血。

　　3、边按边揉：采血后血小板还没有凝固，轻揉出血处不仅不能止血，反而会阻碍血小板凝固甚至加速出血，效果自然适得其反。

　　正确方法：以适宜力量只压不揉。

　　4、袖子过紧：上臂衣袖过紧，导致血液回流不畅，血管内压力增加，血液从穿刺点处流出，导致瘀青、血肿。

　　正确方法：一方面进行按压止血，同时拉下上臂衣袖或在采血前脱去过紧的衣袖，避免上臂被衣服勒得太紧，影响血液正常回流。

10抽血后怎样按压才能有效止血呢?

　　采血后用无菌药棉压紧抽血部位，及时拉下过紧衣袖，在针孔及向上2厘米处进行局部按压，只按不揉。坚持按压3~5分钟，老人及凝血功能异常者，适当延长按压时间。

11采血后出现瘀青、血肿该如何处理?

　　采血后24小时内应保持手臂清洁卫生，尽量避免洗澡、剧烈运动等。如出现淤青、血肿，是穿刺点渗血的表现，24小时后可用热毛巾热敷，促进渗血吸收，瘀青、血肿会自然逐渐消失。

篇5：SOP文件:临床非培养标本的采集及处理操作程序

　　SOP文件:临床非培养标本的采集及处理操作程序

1.目的

　　规范临床待检标本的正确采集、送检和处理。

2.适用范围

　　微生物检验实验室的所有临床检测标本。

3.职责

　　3.1 所有采集标本的人员均需按本SOP操作，实验室工作人员有责任向临床医生、护士或病人宣教。

　　3.2 本标准操作程序的改动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报经下述人员批准签字：室负责人、科主任。

4.操作程序

　　4.1 本实验室检测标本为：血清或血浆、痰、生殖道拭子标本、尿液及脑脊液和胸腹水。

　　4.2 做好标本签收，核对检验单与标本标签是否清楚无误，送检标本是否正确、合格，给所有标本按顺序编号，按如下操作规程操作。

　　4.3 查找抗酸菌操作:将标本置于水浴蒸箱加温杀菌30分钟，取标本残留物或沉淀物加温涂布玻片，液性标本以3000转/分钟离心5分钟，取标本残留物或沉淀物加温涂布玻片并标注编号后固定，行抗酸染色，先滴加抗酸染色第一液加温(用酒精灯在玻片下来回加温置染色液冒热气，但无气泡产生为宜)染色10分钟，自来水冲洗净染液，以硫酸美兰复染2分钟，水洗凉干。

　　镜检与报告：油镜下查找分枝、不规则红色杆菌，按如下标准进行结果报告。

　　1)、镜检100-300个视野(时间不少于4分钟)未发现抗酸菌，继续观察至300个视野仍未发现抗酸菌者报告抗酸菌(—);

　　2)、镜检100个视野找到抗酸菌1-2条者，报告抗酸菌可疑(±)，或重涂片或重送标本检查;

　　3)、镜检100个视野找到抗酸菌3-9条者，报告抗酸杆菌阳性(+);

　　4)、镜检10个视野找到抗酸菌1-9条者，报告抗酸杆菌阳性(2+);

　　5)、镜检每个视野找到抗酸菌1-9条者，报告抗酸杆菌阳性(3+);

　　6)、镜检每个视野找到抗酸菌多于9条者，报告抗酸杆菌阳性(4+)。

　　4.4 查找普通细菌操作：液性标本取离心沉淀物涂片，拭子或脓性标本直接涂布玻片并标注编号后固定。同时取大肠标准株(ATCC25922)和金黄色葡萄球菌标准株(ATCC25922)涂片，一起行革兰氏染色，先滴加第一液染色1分钟，水洗，加第二液媒染1分钟，水洗干净;以95%酒精脱色30秒钟后立即水洗，再加第四液复染30秒钟，水洗后凉干。油镜下查找菌体并观察球杆比例;观察质控菌是否合格。

　　4.5 墨汁染色查找隐球菌：液性标本离心取沉淀物涂片，脓性或拭子标本直接涂片并写号，以无菌接种环粘取少量印度墨汁与玻片上标本混匀，压盖玻片，先低倍镜下找到视野再转离倍镜观察。若找到透亮，圆形强折光，有厚荚膜的菌体报告墨汁染色阳性;否则报告阴性。

　　4.6 白带常规检查：盐水管直接将棉签点至玻片后以高倍镜检有无滴虫;涂片标注编号后固定，行革兰氏染色，先滴加第一液染色1分钟，水洗，加第二液媒染1分钟，水洗干净;以95%酒精脱色30秒钟后立即水洗，再加第四液复染30秒钟，水洗凉干后镜检查找革兰氏阴性双球菌、霉菌或阳性球菌、线索细胞等。阴道清洁度的按如下判断标准报告：

　　Ⅰ度：阴道杆菌为主，并可见大量上皮细胞。

　　Ⅱ度：有部份阴道杆菌，但亦有部份脓细胞和杂菌，上皮细胞少见。

　　Ⅲ度：仅见少量阴道杆菌和上皮细胞，有大量脓细胞和杂菌。

　　Ⅳ度：镜下无阴道杆菌，除少量上皮细胞外，主要的几乎全是脓细胞和大量杂菌。

　　4.7 肥达试验：标本标明编号，以3000转/分钟离心5分钟;取试管架，按每标本排5排试管，每排5支;各标本用加样器取100μl血清置于一支稀释用试管(注明检验号)中，加入1.9ml 0.9%生理盐水混匀，第一排加入1：20倍稀释血清各0.2ml，成1：40倍;后稀释管再加入1.0ml 0.9%生理盐水，成1：40倍稀释，加入第二排试管各0.2 ml。同样方法对倍稀释至第四排试管，第五排各加入0.2ml 0.9%生理盐水作阴性对照。从冰箱中拿出肥达反应试验稀释菌悬液，第一列各加入H诊断菌液0.2 ml,第二列各加入O诊断菌液0.2 ml，第三列各加入甲型诊断菌液0.2 ml,第四列各加入乙型诊断菌液0.2 ml, 第五列各加入丙型诊断菌液0.2 ml,混匀，置37℃水浴箱18-24小时。

　　结果判断：菌体沉淀至试管底成圆点为阴性管，出现散在颗粒状凝集为阳性管。以最高稀释管出现散在颗粒状凝集为报告滴度。若阴性对照出现凝集则需重新稀释配制诊断菌悬液重做试验。

　　4.8 外菲氏试验：标本标明编号，以3000转/分钟离心5分钟;取试管架，按每标本排3排试管，每排5支;各标本用加样器取100μl血清置于一支稀释用试管(注明检验号)中，加入1.9ml 0.9%生理盐水混匀，第一排加入1：20倍稀释血清各0.2ml，成1：40倍;稀释管留1.0ml再加入1.0ml 0.9%生理盐水，成1：40倍稀释，加入第二排试管各0.2 ml。同样方法对倍稀释至第四排试管，第五排各加入0.2ml 0.9%生理盐水作阴性对照。从冰箱中拿出外菲氏反应试验稀释菌悬液，第一列各加入OX19诊断菌液0.2 ml,第二列各加入OX2诊断菌液0.2 ml，第三列各加入OXK诊断菌液0.2 ml,混匀，置37℃水浴箱18-24小时。

　　结果判断：菌体沉淀至试管底成圆点为阴性管，出现散在颗粒状凝集为阳性管。以最高稀释管出现散在颗粒状凝集为报告滴度。若阴性对照出现凝集则需重新稀释配制诊断菌悬液重做试验。

5.引用表格

　　5.1拒收标本记录表：